作为哺乳动物体内的一种白细胞,扮演着至关重要的角色。它不仅是抗原呈递细胞(APC),更在先天性免疫和适应性免疫中发挥着承上启下的作用。在炎症反应中,DC细胞能够高效地加工、处理并递呈抗原,随后成熟并迁移至淋巴组织,将外来物质呈递给初始T细胞。这些初始T细胞进而被激活,分化为具有细胞毒性的CD8+T细胞或CD4+T辅助细胞。而在非炎症条件下,DC细胞的抗原呈递作用同样不容忽视。它们通过呈递自身抗原或无害的环境抗原,诱导调节性T细胞的分化或自身反应性免疫细胞的失活,从而在新型疫苗开发和自身免疫性疾病预防中发挥关键作用。本文将深入探讨小鼠DC细胞的分化过程,并介绍相关的流式检测及磁珠分选方法,以期为科研人员提供有益的参考。
转录组数据揭示,在小鼠骨髓中,造血干细胞(HSC)会分化为共同淋系祖细胞(CLP)和共同髓系祖细胞(CMP)。其中一部分CMP在表达FLT3L后,会进一步分化成巨噬细胞和DC祖细胞(MDP)。MDP被视为共同DC祖细胞(CDP)和单核细胞祖细胞(cMop)的直接前体,其分化路径最终将产生DC系列的多个亚群。
小鼠DC祖细胞(CDPs)的分化路径包括经典DC(cDC)和浆细胞样DC(pDC)。在骨髓中,FLT3L等生长因子会诱导CDP分化为pre-cDC,这些pre-cDC随后被释放到血液中,以迁移至外周和淋巴器官并进一步分化为成熟的cDC。pre-cDC可分化成为两种cDC亚型:cDC1或cDC2细胞。而pDC则是在骨髓中,由CDP在转录因子Irf8和TCF4(E2-2)的调控下持续产生的。
此外,研究还发现了具有pDC和cDC2表型和特征的一种“过渡”DC(tDC)亚群。在炎症环境下,某些单核细胞亚群也能分化为单核细胞衍生的DC(Mo-DC)。这些发现为我们深入理解小鼠DC细胞的分化过程提供了重要的线索。
为了方便科研人员研究小鼠DC细胞,我们整理了现有的小鼠DC细胞及其在淋系组织、肺部、肠道、皮肤组织上的表型标记。这些标记指标将有助于您快速查找并应用于相关实验中,从而推动您在小鼠DC细胞领域的研究进展。
图2. 小鼠不同组织上DC细胞的标记
在研究小鼠DC细胞时,流式分析是一种常用的技术手段。通过这种方法,我们可以对特定组织中的DC细胞进行深入的分析和标记。以皮下淋巴结样本为例,我们可以利用特定的抗体和荧光染料来标记和区分不同类型的DC细胞,从而了解它们在体内的分布、数量和功能状态。这种流式分析技术不仅为小鼠DC细胞的研究提供了有力的工具,也为其他相关领域的研究带来了新的突破。
作者通过酶消化法将小鼠腹股沟淋巴结制备成单细胞悬浮液。在排除细胞碎片、双细胞和死细胞后,作者首先圈选出活CD45+细胞(图3.A)。接着,为进一步纯化淋巴细胞,作者排除了CD19+MHC-II+B细胞、NK1.1+NK细胞和T细胞,其中CD3+T细胞被进一步细分为CD4+和CD8+T细胞亚群(图3.B)。随后,作者在非淋巴细胞中区分出pDC细胞群(pDCA-1+Ly-6C+)、单核细胞(Ly-6C+Ly-6G-)和中性粒细胞(Ly-6C+Ly-6G+)。通过CD11b与CD11c的进一步分析,作者将DC与非DC骨髓细胞成功分开(图3.C)。在CD11c+群体中,作者发现MHC-II+DC,这些DC又可分为迁移性DC(Migratory DC,MHC-IIhighCCR7+)和驻留性DC(Resident DC, MHC-II+CCR7-)(图3.D)。迁移性DC由cDC1(XCR1+CD172a-)、CD103-和CD103+亚群,以及cDC2(CD24-CD207-)和LC(CD24+CD207+)组成(图3.E)。在驻留性DC中,作者观察到XCR1表达CD103–和CD103+的两个cDC1亚群,而cDC2则分为CD172a-XCR1-DN DC,以及表达CD11b–和CD11b+的两个cDC2亚群(图3.F)。
图4. 使用MojoSort™ Mouse Pan Dendritic Cell Isolation Kit分选小鼠细胞DC细胞的分选前后对比
为了进一步研究DC细胞,我们提供了MojoSort™ Mouse Pan Dendritic Cell Isolation Kit,它能够高效且轻柔地富集小鼠的泛树突状细胞,包括cDC和pDC。通过酶消化法,我们制备了C57BL/6小鼠脾脏的单细胞悬液,并利用该试剂盒进行分选。随后,通过Helix NP™ Blue排除了死细胞,并使用Mouse PE CD11c和Mouse APC CD317进行流式染色。结果显示,经过分选后,cDC的纯度从7.78%显著提升至61.7%,而pDC的纯度也从0.5%提升至5.38%。这一显著提升将为DC细胞的研究提供更为纯净的样本。此外,我们也提供人和小鼠的DC细胞MojoSort™磁珠分选产品,以满足不同研究的需求。