复制型病毒/病毒载体回复突变（Replication Competent Virus, RCV），可产生于病毒载体制造过程中的所有步骤当中。并且，RCV感染宿主细胞后能随宿主细胞在培养液中增殖、扩增对人体健康具有严重的隐患，是免疫细胞治疗类产品，如CAR-T产品的主要安全性风险之一。近年来，CAR-T细胞制备过程中，伴随载体的不断升级优化，重组产生的复制型逆转录病毒/慢病毒(Replication Competent Retrovirus / Lentivirus, RCR/RCL)逐渐降低，但产生RCR/RCL的风险隐患至今仍不能完全排除。由2022年5月发布的《体外基因修饰系统药学研究与评价技术指导原则（试行）》指出RCR/RCL检测作为安全性检测在细胞药物的研发和生产过程中至关重要，相关产品不得检出RCR/RCL，可知病毒载体相关产品中，RCR/RCL的检测至关重要。
慢病毒( lentivirus，LV) 载体是以人类免疫缺陷Ⅰ型病毒( human immunodeficiency virus，HIV-1) 为基础发展起来的基因治疗载体，它源于逆转录病毒，但又有所不同。LV与一般的逆转录病毒载体相比较，具有感染能力强、容纳更大目的片段的基因、能感染分裂细胞和非分裂细胞和很少引发免疫反应等优点，目前被选为CAR-T细胞产品的主要病毒载体。
《CAR-T细胞治疗产品质量控制检测研究及非临床研究考虑要点》一文提到：目前 RCR/RCL 的检测方法主要有指示细胞培养法、ELISA法(p24蛋白测定)、PCR/q-PCR法（通过psi-gag或VSV-G聚合酶链反应）和转录酶活性测定法(PERT)等。其中，利用指示细胞培养法对生产过程中的病毒（上清液、病毒生产终末期细胞）存在的RCL进行培养扩增，并在培养终点进行重复检测是FDA推荐的RCL检测方法。
指示细胞培养法分为2个阶段，初始扩增阶段和指示阶段：初始扩增阶段是将待测样品与C8166-45细胞（人类脐带血淋巴细胞）共培养21天，至少传代5次后收集细胞上清，分别采用ELISA法测定培养基中的P24蛋白表达量和与新的C8166-45细胞一起共培养，7 d后采用2种不同原理的方法检测RCL，如ELISA、PCR或qPCR(psi-gag／VSV-G PCR，ELISA p24，PERT)。RCL指示细胞培养法分组和检测如图1和2。
图1.指示细胞共培养分组
图2.RCL检测方法
根据现有法规和指导原则可以发现，RCL的检测方法主要包含指示细胞培养法、ELISA法、PCR/q-PCR法和PERT法。因为指示细胞培养法检测需28天，并且因为阳性对照病毒的性质，要求其需要在P3或者P2实验室环境中进行，致使该方法具有耗时长，环境要求高的特点。相比而言,基于VSV-G序列的q-PCR方法或基于psi-gag序列的PCR方法，因其具有检测时间短、环境条件简单、灵敏度高和可重复性强等优点，被许多CAR-T申报企业作为快速放行方法。
除却指示细胞培养法，其他3种快速检测RCL的检测方法优缺点如下：
ELISA 法(p24 蛋白测定)：适用于由载体生产过程中病毒基因组之间的重组形成RCL的检测。但，对于VSV-G 包膜质粒和来源于其他病毒的 gal-pol 基因功能组件之间发生重组不表达p24蛋白的假型病毒不适用。其优点为适用性广（浓缩载体、终末细胞、血清血浆等多种样本）、灵敏度高和可定量等。
使用qPCR的方法测定VSV-G基因和PCR方法检测由病毒载体质粒和包装质粒重组产生的psi-gag基因序列，具有灵敏度高，可重复性和操作简单等优点。
测定逆转录酶活性的方法，它可以用来检测RCL相关的不同结构的逆转病毒，缺点为在某些细胞检测中，存在背景高的现象。
美国FDA要求对于采用γ-逆转录病毒载体和慢病毒载体的产品，需要在整个生产过程及不同阶段进行RCL/RCR检测，针对载体生产用主细胞库、工作细胞库、生产终末细胞、载体上清液及在体外培养超过4天的载体转到细胞进行检测，具体如如图3。针对慢病毒载体使用时RCL的检测，除了金标准——指示细胞培养法，还需要选择2种不同原理的快检方法对其进行补充检测。
图3.RCL/RCR检测阶段
