2001年Raymond. Deshaies和Craig. Crews等人提出了Protac这个概念,并成功地设计合成了第一批多肽Protac用于降解甲硫氨酰氨肽酶2(MetAP-2)。到了2019年,行业先驱Crews教授开发的ARV-110,以全球首个Protac药物的身份正式进入临床试验阶段,蛋白降解靶向嵌合体 (Proteolysis targeting chimeria,Protac)这类神奇的小分子越来越受到关注。

以泛素-蛋白酶体系统降解蛋白质为基础的Protac,与传统的抑制剂的作用机制大不相同,它往往不需要与靶蛋白特异性结合。只需要捕获靶蛋白形成E3连接酶-Protac-靶蛋白三元复合物就可以进行靶蛋白降解,因此能够对很多“无成药性”蛋白发挥作用。Protac药物的优势明显:用量小,毒性低;可以克服靶蛋白突变/过表达引起的耐药性;不依赖于亲和力,可选择性高;可以清除蛋白堆积。

Protac由三部分组成:一个与E3连接酶结合的配体,用于引导蛋白降解;一个与靶蛋白结合的配体,用于引导小分子的靶向定位;以及一个负责嵌合两个配体的连接子。本文主要介绍相关的E3连接酶配体以及连接子。

图1 Protac作用机理

E3连接酶配体

在人类基因组中已经发现了600多个E3连接酶,但是其中只有少数被用于Protac设计。目前用于开发小分子Protac药物的E3连接酶,主要是MDM2、IAPs、VHL、CRBN、DCAF和RNF等,它们各有优缺点。[1]

1. MDM2-Protacs

最早的MDM2-Protac利用Nutlin-3a的衍生物作为结合配体降解雄激素受体(AR)。[2]虽然其并非是很有效的降解剂,但它为Protac降解靶蛋白提供了有力证据。再之后Idasanutlin的衍生物被用作MDM2结合配体,设计得到的Protac分子A1874可以有效降解溴结构域蛋白4(BRD4)。[3]

图2 A1874(蓝色:PEG3-linker 红色:Idasanutlin)

MDM2-Protacs选择性结合在MDM2表面的p53位点,可以同时稳定p53蛋白(抑癌基因)和降解靶蛋白,表现出更好的抗癌活性。但是,MDM2结合配体不易合成获得,这也导致了其应用的有限性。

2.IAP-Protacs

随着研究的深入,与凋亡蛋白抑制因子家族(IAP)的E3连接酶结合的配体已被用于Protac的设计。早期的IAP-Protacs利用Bestatin的衍生物作为靶向细胞视黄酸结合蛋白-1/2(CRABP-1/2)的IAP配体。[4] 再后来,LCL-161MV-1的衍生物也被用作IAP的配体用于设计Protac降解BRD4, AR,ABL, ERα等靶蛋白。[5,6]

图3 SNIPER(BRD4)-1(蓝色:PEG4-linker 红色:LCL-161)

这一系列的Protac也被称为SNIPERs(specific and nongenetic IAP - dependent protein erasers)。 因为某些肿瘤细胞会通过引导IAPs上调来逃避凋亡,而SNIPERs往往可以同时降解IAPs和靶蛋白,从而发挥更强的抗肿瘤作用。

3.VHL- Protacs

小分子VHL- Protacs的特异选择性是由羟基脯氨酸决定的,最常见的VHL配体是(S,R,S)-AHPC及其衍生物。Protac分子MZ1所选择的BRD4结合配体尽管对BRD2/BRD3没有选择性,但可以选择性降解BRD4蛋白。[7]当然VHL-Protac还可以降解多种其它靶蛋白,包括ERRα、RIPK2、ABL、FLT3、FAK和TBK1。[8,9,10]大多数VHL-Protacs都是通过酰胺键与S-叔丁基-亮氨酸部分连接中间由聚乙二醇(PEG)或聚亚甲基组成的连接子,再连接到靶蛋白配体上。不过连接位点也不是唯一的,VZ185和ARD-69这两个Protac就分别展示了两种新型的连接方式。[11,12]

图4 MZ1(蓝色:PEG3-linker 红色:(S,R,S)-AHPC)

VHL-Protacs的主要优势在于其靶向特异性,同时对某些靶标它可能具有更好的肿瘤选择性。另外,VHL的E3连接酶与配体的结合亲和力不需要很高也是其优点之一。不过VHL-Protacs也有缺点。VHL是一种肿瘤抑制蛋白,在一些肿瘤细胞如透明细胞性肾细胞癌或肾癌中经常会发生突变。因此,VHL-Protacs不能用于治疗VHL基因突变或缺失的肾癌,需要谨慎优化剂量来避免VHL的抑癌功能。另外,VHL-Protacs的分子量往往较高,如何开发口服生物利用率高的VHL-Protacs也极具挑战。

4.CRBN- Protacs

自从一系列亚胺类药物被确定为CRBN的配体后,越来也多的CRBN-Protacs被开发出来。第一个CRBN-Protac分子dBET1以Thalidomide作为CRBN配体诱导BRD2、BRD3和BRD4的降解。[13]同年,ARV-825这种以Pomalidomide为配体的CRBN-Protac选择性降解Burkitt’s淋巴瘤细胞的BRD4。[14]Lenalidomide为CRBN配体的BETd-260和QCA-570在体外实验中也获得了更好的降解效果。[15,16]CRBN-Protacs同样也可以降解例如BCL6,CDK8/9,PI3K,BTK,ALK,HDAC6,sirtuin,PCAF / GCN5,pirin和FKBP12等多种底物。另外,利用Pomalidomide(S,R,S)-AHPC衍生物还得到了一种新型HOMO-Protacs,有趣的是其优先选择降解CRBN,而对VHL只是轻度降解。[17]

图5 ARV-825(蓝色:PEG4-linker 红色:Pomalidomide)

与VHL-Protacs相比,CRBN-Protacs可能会降解更大范围的靶蛋白。这是因为CRBN的蛋白结合面比VHL大,从而导致其具有更广泛的靶点适应性。另外由于CRBN在肿瘤细胞和正常细胞中广泛表达,因此CRBN-Protacs具有较小的组织选择性;而且CRBN-Protacs的分子量较低,其口服生物可利用性更高。

5.Others

除了上述四个常见的E3连接酶, DCAF家族和RNF家族也有可能被用于Protac的设计。例如,磺胺类药物indisulam通过募集 DCAF15 的E3连接酶来诱导 RBM39 降解,从而在许多白血病和淋巴瘤细胞系中发挥细胞毒性。

图6 E3连接酶配体及其靶蛋白

连接子

Protac的每个单元都影响着其蛋白降解性质,特别的,连接子的拓扑结构对生物学性质和理化性质都起着至关重要的作用。例如,前文提到的MZ1是由一个PEG3连接子与VHL的E3连接酶配体组成的Protac。其DC50 (半数治疗量)为<100nm,并且Dmax达到96%。但当对连接子进行优化以及对VHL结合配体进行小修饰之后,得到的ARV-771不仅DC50<5nm,Dmax更是达到了99%。[18]

图7 ARV-771

1.连接子结构影响因素

影响Protac性质的连接子拓扑结构主要在于三点:长度,刚性以及结合位点。首先,连接子的长度需要优化。如果连接子太短会发生空间冲突,从而破坏三元复合物,以至于降低Protac的降解能力。而如果连接子过长,会增加Protac两头的相对运动性,降低E3连接酶与靶蛋白的结合常数,从而降低三元复合物的稳定性。另外还会增加分子量,并可能降低其细胞通透性。

其次,提高连接子的刚性是改善Protac药代动力学特性和口服生物利用度的有效途径。连接子的适当刚性也可以限制Protac的生物活性构象,这可能改善靶蛋白的降解活性。

最后,靶蛋白配体和E3连接酶配体的连接位点的不同对Protac的二元结合亲和力、三元复合物构象以及理化和药代动力学特性均有显著影响。例如,利用Nutlin-3a作为结合配体的MDM2-protacs除了降解靶蛋白AR,还诱导自身泛素化从而降解cIAP1。为了克服自泛素化,MDM2配体的连接位点用酰胺基来取代酯基,就产生对cIAP1没有任何影响的Protac。[19]酰胺键、醚键、烷基胺、碳碳单键和碳碳三键都是常见的连接方式。

2.连接子类型

最初的连接子从柔性连接剂开始,如PEG或聚亚甲基链。亲水的PEG引入可以提高水的溶解度。而且在三元复合结构里氧原子可能与蛋白质残基相互作用,从而提供三元复合结构的协同性。

而芳香族、杂环和大环连接子结构可以最大限度地减少不利构象,从而实现Protac性质的优化。例如,亲水结构哌嗪具有改善水溶性和平衡亲脂性的潜力。

此外,点击化学中基于铜催化得叠氮-炔烃环加成(CuAAC)和Diels-Alder (DA)反应也可以用于Protac的制备。由此产生的带有杂环连接子的Protacs允许降解能力的快速验证。该技术还允许活性Protacs在细胞内通过自组装来实现蛋白质降解。

然而,在没有三元复合物共晶结构的前提下,发现最优刚性链还是十分有挑战性的。[20,21]

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参考文献

1. Edmondson, S.D., Yang, B., Fallan, C., Proteolysis Targeting Chimeras (PROTACs) in ‘Beyond Rule-of-Five’ Chemical Space: Recent Progress and Future Challenges, Bioorganic & Medicinal Chemistry Letters (2019).

2. Schneekloth AR, Pucheault M, Tae HS, Crews CM. Targetedintracellular protein degradation induced by a small molecule: Enroute to chemical proteomics. Bioorg Med Chem Lett.2008;18:5904–8.

3. Hines J, Lartigue S, Dong H, Qian Y, Crews CM. MDM2-recruiting PROTAC offers superior, synergistic antiproliferativeactivity via simultaneous degradation of BRD4 and stabilizationof p53. Cancer Res. 2019;79:251–62.

4. Itoh Y, Ishikawa M, Naito M, Hashimoto Y. Protein knockdown using methyl bestatin-ligand hybrid molecules: design and synthesis of inducers of ubiquitination-mediated degradation of cellular retinoic acid-binding proteins. J Am Chem Soc. 2010;132(16): 5820-5826.

5. Ohoka N, Morita Y, Nagai K, Shimokawa K, Ujikawa O, Fujimori I, et al. Derivatization of inhibitor of apoptosis protein (IAP) ligands yields improved inducers of estrogen receptor alpha degradation. J Biol Chem. 2018;293:6776–90.

6. Shibata N, Miyamoto N, Nagai K, Shimokawa K, Sameshima T, Ohoka N, et al. Development of protein degradation inducers of oncogenic BCR-ABL protein by conjugation of ABL kinaseinhibitors and IAP ligands. Cancer Sci. 2017;108:1657–66.

7. Zengerle M, Chan KH, Ciulli A. Selective Small Molecule Induced Degradation of the BET Bromodomain Protein BRD4. ACS Chem Biol. 2015;10(8): 1770-1777.

8. Gadd MS, Testa A, Lucas X, et al. Structural basis of PROTAC cooperative recognition for selective protein degradation. Nat Chem Biol. 2017;13(5): 514-521.

9. Lai AC, Toure M, Hellerschmied D, et al. Modular PROTAC Design for the Degradation of Oncogenic BCR-ABL. Angew Chem Int Ed Engl. 2016;55(2): 807-810.

10. Crew AP, Raina K, Dong H, et al. Identification and Characterization of Von Hippel-Lindau-Recruiting Proteolysis Targeting Chimeras (PROTACs) of TANK-Binding Kinase 1. Journal of medicinal chemistry. 2018;61(2): 583-598.

11. Zoppi V, Hughes SJ, Maniaci C, et al. Iterative design and optimization of initially inactive Proteolysis Targeting Chimeras (PROTACs) identify VZ185 as a potent, fast and selective von Hippel-Lindau (VHL)-based dual degrader probe of BRD9 and BRD7. Journal of medicinal chemistry. 2018.

12. Han X, Wang C, Qin C, et al. Discovery of ARD-69 as a Highly Potent Proteolysis Targeting Chimera (PROTAC) Degrader of Androgen Receptor (AR) for the Treatment of Prostate Cancer. Journal of medicinal chemistry. 2019.

13. Winter GE, Buckley DL, Paulk J, et al. DRUG DEVELOPMENT. Phthalimide conjugation as a strategy for in vivo target protein degradation. Science. 2015;348(6241): 1376-1381.

14. Lu J, Qian Y, Altieri M, et al. Hijacking the E3 Ubiquitin Ligase Cereblon to Efficiently Target BRD4. Chem Biol. 2015;22(6): 755-763.

15. Zhou B, Hu J, Xu F, et al. Discovery of a Small-Molecule Degrader of Bromodomain and Extra-Terminal (BET) Proteins with Picomolar Cellular Potencies and Capable of Achieving Tumor Regression. Journal of medicinal chemistry. 2018;61(2): 462-481.

16. Qin C, Hu Y, Zhou B, et al. Discovery of QCA570 as an Exceptionally Potent and Efficacious Proteolysis Targeting Chimera (PROTAC) Degrader of the Bromodomain and Extra-Terminal (BET) Proteins Capable of Inducing Complete and Durable Tumor Regression. Journal of medicinal chemistry. 2018;61(15): 6685-6704.

17. Girardini M, Maniaci C, Hughes SJ, Testa A, Ciulli A. Cereblon versus VHL: hijacking E3 ligases against each other using PROTACs. Bioorg Med Chem. 2019;27:2466–79.

18. Raina K, Lu J, Qian Y, et al. PROTAC-induced BET protein degradation as a therapy for castration-resistant prostate cancer. Proc Natl Acad Sci U S A. 2016;113(26): 7124-7129.

19. Itoh Y, Ishikawa M, Kitaguchi R, Sato S, Naito M, HashimotoY. Development of target protein-selective degradation inducerfor protein knockdown. Bioorg Med Chem. 2011;19:3229–41.

20. Khan, S., He, Y., Zhang, X. et al. PROteolysis TArgeting Chimeras (PROTACs) as emerging anticancer therapeutics. Oncogene 39, 49094924 (2020).

21. Stacey-Lynn Paiva and Craig M Crews. Targeted protein degradation: elements of PROTAC design. Current Opinion in Chemical Biology 2019, 50:111–119.

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